Los laboratorios del grupo Histopat disponen de equipamiento, tecnología y personal especializado para efectuar todo tipo de estudios de Citopatología e Histopatología con el apoyo de las técnicas más avanzadas de Inmunohistoquímica y Biología molecular.

El laboratorio de tejidos dispone de equipos de procesado tisular, tinción y montaje automatizados, múltiples unidades de microtomía en parafina o por congelación y una unidad especializada en elaboración de "microarrays" tisulares (TMA).

Se estudian anualmente alrededor de 10.000 casos de patoloqía quirúrgica distribuidos entre un grupo de diez patólogos por criterios de especialización, con intervención de distintos profesionales en los casos complejos o susceptibles de discusión. El sistema informático incorpora protocolos de estudio específicos y permanentemente actualizados para recopilación y gestión de datos clínicos, morfológicos y moleculares y producción de informes.

HISTOPATOLOGÍA

Patología quirúrgica general.

Patología ginecológica:

bulletBiopsia de cérvix: diagnóstico y seguimiento de SIL.
bullet Tipificación de Papilomavirus por PCR.
bullet Biopsia de endometrio. Estudio funcional.
bullet Patología mamaria. Biopsia peroperatoria.

Patología fetal, pediátrica y obstétrica.

Patología digestiva:

bulletBiopsia endoscópica.
bullet Estudio molecular de reordenamientos IgH sobre biopsia gástrica para diagnóstico y seguimiento de Linfoma MALT.
bullet Estudio inmunohistoquímico para diagnóstico y clasificación de neoplasias digestivas.
bullet Biopsia intestinal (estudio de malabsorción).
bullet Estudio molecular de enfermedad celíaca (haplotipos HLA-DQ2 y HLA-DQ8).
bullet Biopsia hepática.
bullet Biopsia de páncreas. Estudio de mutaciones del oncogen K-Ras.

Dermatopatología:

bulletEnfermedades inflamatorias y degenerativas.
bullet Enfermedades ampollosas y autoinmunitarias.
bullet Inmunofluorescencia.
bullet Neoplasias cutáneas.

Patología oral y maxilofacial.

Patología respiratoria:
bulletBiopsia endoscópica.
bulletBiopsia pleural.
bulletEstudio inmunohistoquímico de diagnóstico diferencial.
bulletBiopsia pulmonar. Patología neoplásica e inflamatoria.

Patología urológica:
bullet

Biopsia vesical: Diagnóstico y seguimiento del Carcinoma urotelial.

bullet

Estudio molecular de mutaciones de P53.

bullet

Biopsia prostática.

bulletDiagnóstico diferencial inmunohistoquímico sobre biopsia con aguja: carcinoma vs. proliferación microacinar atípica.

Andrologia:

bulletBiopsia testicular. Estudio de infertilidad.

Nefropatología:

bulletBiopsia renal.
bullet Inmunofluorescencia (Glomerulopatías).

Neuropatología:

bulletTumores cerebrales.
bullet Patología inflamatoria y degenerativa.
bullet Biopsia muscular y de nervio periférico (Estudio histoquímico y ultraestructural).

Patología cardiovascular.

Patología endocrina:

bulletTumores neuroendocrinos.
bullet Patología tiroidea y paratiroidea.
bullet Patología hipofisaria.
bullet Patología adrenal.
bullet Estudio inmunohistoquímico del perfil hormonal.
bullet Estudio molecular de mutaciones del oncogen RET (Síndrome MEN. Estudio familiar).

Patología osteoarticular y de tejidos blandos.

Hematopatología:

bulletGanglios linfáticos.
bullet Biopsia de médula ósea.
bullet Patología esplénica.
bullet Estudio del inmunofenotipo de linfomas (Hodgkin vs linfoma B vs linfoma T).
bullet Estudios moleculares de clonalidad mediante reordenamientos IgH y receptores de células T.
bullet Tipificación molecular de linfoma del manto y linfoma folicular.
bullet Estudio simultáneo de sangre periférica o aspirado medular. Citología hematológica y citometría de flujo.

Fijación y conservación de muestras tisulares.

El fijador idóneo para muestras tisulares en la gran mayoría de los casos es el formol al 10%, tamponado con acetato sódico, aplicado inmediatamente después de la obtención de la muestra para minimizar la autolisis y a temperatura ambiente. La conservación en nevera retarda el proceso de fijación y la congelación de muestras en formol puede deteriorar seriamente el tejido. El volumen de fijador debe ser proporcional al de la muestra. En biopsias pequeñas puede utilizarse habitualmente un volumen de líquido 10 veces superior al de la muestra o más. En piezas quirúrgicas voluminosas es problemático mantener esta proporción pero siempre debe emplearse como mínimo un volumen de fijador igual al de muestra x 3 seleccionando recipientes de capacidad suficente y procurando que la muestra quede totalmente rodeada y cubierta por líquido fijador. Los recipientes deben ser herméticos y de boca ancha para que no dificulten la extracción de la muestra una vez fijada.

Muchas piezas quirúrgicas complejas requieren disección por parte del patólogo para facilitar la penetración apropiada del fijador. En estos casos, aunque la pieza se conserve en formol, debe remitirse cuanto antes al laboratorio.

Algunos tipos de biopsias requieren fijadores especiales (biopsia de médula ósea, biopsia testicular, biopsia renal, muestras para microscopía electrónica) o material en fresco (biopsia muscular para estudio enzimático, muestras para inmunofluorescencia o microbiología). En este caso lo más apropiado es consultar con el laboratorio que va efectuar el estudio, antes de obtener la muestra.

La mayoría de técnicas de Patología molecular (inmunohistoquímica, receptores hormonales, PCR) pueden efectuarse sobre tejido fijado en formol e incluido en parafina pero es indispensable que el procedimiento de fijación y procesado sea idóneo. En general, es esencial no demorar la fijación de la muestra ni su entrega al laboratorio, aunque se conserve en formol, para evitar períodos de fijación excesivamente prolongados que pueden dificultar algunos estudios moleculares.

Nuestros laboratorios proporcionan a quirófanos y centros clínicos concertados los recipientes y fijadores apropiados para las muestras más usuales.

CITOPATOLOGÍA

Citología ginecológica:

bulletDetección y seguimiento de la neoplasia cervical intraepitelial (CIN, SIL).
bullet Estudio de Papilomavirus (HPV) por PCR sobre toma ginecológica (torunda).
bullet Citología hormonal.

Citología respiratoria:

bulletEstudio seriado de esputo.
bullet Broncoaspirado.
bullet Lavado bronquioalveolar.
bullet Estudio de subpoblaciones linfocitarias por citometría de flujo.

Citología urológica:

bulletDiagnóstico y seguimiento del carcinoma urotelial.
bulletEstudio inmunohistoquímico de p53 sobre frotis citológicos.
bullet Estudio de anomalías cromosómicas por FISH sobre muestras citológicas.

Citología digestiva.

Citología de líquidos:

bulletLíquido pleural y peritoneal.
bullet Líquido sinovial.
bullet Líquido cefalorraquídeo.

Citología por punción-aspiración:

bulletPatología mamaria.
bullet Patología tiroidea.
bullet Patología ganglionar.
bullet Patología de glándulas salivales.
bullet Tumores de partes blandas.
bullet Patología de órganos internos.

Estudio inmunohistoquímico sobre frotis citológicos o bloque celular para diagnóstico diferencial en neoplasias o detección de agentes infecciosos.

Fijación y conservación de muestras citológicas.

El fijador idóneo para muestras líquidas (esputos, derrames, orina, lavados etc) es el alcohol etílico al 50% y debe emplearse siempre que la muestra no pueda ser procesada de inmediato en el laboratorio.

El mismo procedimiento puede utilizarse en las muestras líquidas obtenidas por punción-aspiración. El mismo fijador puede utilizarse para efectuar el lavado de la aguja después de la punción y remitirlo en recipiente aparte. En caso de obtenerse fragmentos tisulares, pueden fijarse en formol en otro recipiente (ver fijación de muestras tisulares).

Para las muestras citológicas extendidas sobre portaobjetos (frotis) puede utilizarse como fijador alcohol etílico al 96% o utilizar spray fijador que facilita el transporte posterior de la muestra sin líquido. En ambos casos la fijación debe ser inmediata. Algunos laboratorios utilizan métodos de tinción que requieren material secado al aire, sin fijar. En este caso el clínico debe estar informado para conservar el material adecuadamente.